Zaawansowany Real-Time PCR – analizy danych i troubleshooting w praktyce

4499.00 zł netto/os.
5533.77 zł brutto/os.

Podnieś swoje kompetencje w zakresie diagnostyki molekularnej i przejdź od rutynowego wykonywania procedur do zaawansowanej interpretacji procesów Real-Time PCR. Program szkolenia został zaprojektowany tak, aby wyposażyć Cię w unikalną wiedzę z obszaru troubleshootingu oraz umiejętność krytycznej analizy złożonych danych eksperymentalnych. Dzięki intensywnej pracy na rzeczywistych przypadkach (case studies), zyskasz biegłość niezbędną do samodzielnego rozwiązywania problemów badawczych i optymalizacji procesów w profesjonalnym laboratorium.

Cel szkolenia

Uczestnik osiągnie pełną samodzielność w projektowaniu i przeprowadzaniu reakcji qPCR oraz biegłość w zaawansowanej interpretacji wyników, w tym diagnozowaniu przyczyn nietypowych błędów (Troubleshooting). Dzięki analizie licznych case studies, zdobędzie unikalną umiejętność krytycznej oceny danych, która pozwoli mu na profesjonalne zarządzanie procesem badawczym i diagnostycznym. Wyjdzie z gotowym warsztatem eksperckim, gotowym do natychmiastowego wdrożenia w pracy laboratoryjnej.

Zakres merytoryczny

I. Zaawansowane Projektowanie i Optymalizacja

  • Dobór genów referencyjnych (housekeeping genes) – dlaczego jeden to za mało?
  • Projektowanie sond (TaqMan vs Molecular Beacons) – aspekty termodynamiczne.
  • Strategie multipleksowania (kilka celów w jednej probówce).

II. Matematyka w qPCR i Analiza Ilościowa

  • Analiza względna
  • Analiza bezwzględna

III. Masterclass: Troubleshooting i Case Studies (Dzień 3)

  • Problemy z matrycą: Inhibicja reakcji .
  • Anomalie krzywych: „Hook effect”, szum tła, przesunięcia linii bazowej.
  • Problemy ze specyficznością: Analiza krzywych topnienia w formacie SYBR Green – odróżnianie dimerów starterów od produktów niespecyficznych.
  • Błędy techniczne: Efekt brzegowy na płytce, błędy pipetowania, zanieczyszczenia krzyżowe.

Adresaci szkolenia

  • Absolwenci i studenci ostatnich lat kierunków: diagnostyka laboratoryjna, mikrobiologia, biotechnologia, biologia, chemia.
  • Pracownicy laboratoriów diagnostycznych i badawczych, którzy chcą pogłębić umiejętności interpretacyjne.
  • Osoby planujące samodzielne projektowanie eksperymentów qPCR oraz analizę wyników w badaniach naukowych i diagnostyce klinicznej.

Metody pracy

  • Część Teoretyczna (Wykłady Eksperckie): Skupienie na zaawansowanej optymalizacji, matematycznych modelach analizy ilościowej oraz kryteriach walidacji testów.
  • Część Warsztatowa (Case Studies – NOWOŚĆ): Intensywna praca z rzeczywistymi danymi.  Analiza trudnych przypadków – od artefaktów po błędy techniczne.
  • Część Praktyczna (Laboratorium): Samodzielne przeprowadzenie pełnego cyklu badawczego.

Program szkolenia

                                                                I DZIEŃ SZKOLENIA:
9:00 – 10:00 Wprowadzenie uczestników szkolenia, przywitanie, kwestionariusz pre-post oraz wykład na temat bezpieczeństwa i higieny pracy oraz ocena ryzyka
10:00 – 13:30 Zapoznanie uczestników z programem i harmonogramem szkolenia. 

Cz. I teoretyczna – podstawowe informacje na temat techniki qPCR i jej modyfikacje, izolacja materiału genetycznego oraz sposoby oceny skuteczności tego procesu.
13:30 – 14:00 Przerwa
14:00 – 16:00 Cz. I praktyczna – Izolacja DNA bakteryjnego oraz ocena jego ilości i czystości
                                                              II DZIEŃ SZKOLENIA
9:00 – 11:00 Cz. II praktyczna – Przygotowanie mieszaniny reakcyjnej do qPCR oraz praca z płytką 
11:00 – 12:30 Reakcja qPCR.

W międzyczasie cz. II teoretyczna – Zasady projektowania starterów, wybór stabilnego genu referencyjnego, jak kontrolować przebieg reakcji i interpretować wyniki, różne zastosowania metody qPCR
12:30 – 13:00 Przerwa
13:00 – 15:00  Analiza wyników przeprowadzonego badania w tym analiza krzywych amplifikacji, interpretacja krzywych amplifikacji, identyfikacja problemów (np. niespecyficzne produkty, brak amplifikacji), analiza krzywych topnienia (dla SYBR Green), ocena specyficzności produktów PCR
                                                            III DZIEŃ SZKOLENIA
09:00-11:00 Analiza przypadków klinicznych i naukowych – jak czytać surowe dane?
11:00-13:00 Troubleshooting panel. Samodzielne diagnozowanie przyczyn nieudanych reakcji (inhibicja, dimery, błędy sprzętowe).
13:00-13:30 Przerwa
13:30-14:30 Konsultacje indywidualne projektów uczestników
14:30-14:45 Kwestionariusz pre-post, ankieta ewaluacyjna
14:45-15:00 Wręczenie zaświadczeń i zakończenie szkolenia

Efekty szkolenia dla uczestników i dla organizacji

To szkolenie wyposaży Cię w:

Wiedzę:

  • Znajomość podstawowych zasad reakcji real-time PCR
  • Rozumienie mechanizmu działania reakcji
  • Wiedza na temat składników reakcji (matryca DNA, startery, sondy, polimeraza) i ich roli.
  • Znajomość różnic między sondami stosowanymi w reakcji, takimi jak SYBR Green i sondy TaqMan.
  • Znajomość zastosowań real-time PCR w diagnostyce i badaniach naukowych
  • Umiejętność analizowania i interpretowania krzywych amplifikacji i topnienia
  • Znajomość metod analizy danych i interpretacji wyników metoda względną i bezwzględną

Umiejętności:

  • Przygotowanie i optymalizacja reakcji 
  • Samodzielne przygotowanie mieszanin reakcyjnych
  • Umiejętność projektowania i optymalizacji starterów 
  • Obsługa termocyklera Applied Biosystem oraz innych urządzeń laboratoryjnych
  • Programowanie i monitorowanie przebiegu reakcji
  • Umiejętność rozwiązywania problemów technicznych podczas reakcji
  • Przeprowadzanie analizy wyników z wykorzystaniem specjalistycznego oprogramowania
  • Interpretacja wyników i wnioskowanie na ich podstawie
  • Rozwiązywanie problemów związanych z niespecyficznymi produktami, brakami amplifikacji itp.

Postawy/Kompetencje społeczne:

  • Efektywna komunikacja i współpraca z innymi uczestnikami i prowadzącymi
  • Umiejętność dzielenia się wiedzą i doświadczeniami z innymi
  • Świadomość znaczenia bezpieczeństwa i higieny pracy w laboratorium
  • Stosowanie odpowiednich procedur i środków ochrony osobistej
  • Dążenie do ciągłego rozwoju tj. otwartość na nowe technologie i metody.

Inne:

  • Efektywne planowanie i organizacja pracy w laboratorium.
  • Umiejętność zarządzania czasem podczas przeprowadzania eksperymentów
  • Umiejętność krytycznej analizy wyników eksperymentalnych.
  • Szybkie i efektywne rozwiązywanie problemów napotkanych podczas pracy laboratoryjnej

Dokument wystawiany po szkoleniu

Dokument w formie papierowej  wystawiany po szkoleniu potwierdzający uczestnictwo w szkoleniu, wydawany bezterminowo.

Biogramy trenerów

Magdalena Ponichtera

Doświadczony pracownik w dziale Badań i Rozwoju w IMMUNOLAB sp. z o.o. Od 2018 roku zajmuje się badaniami z zakresu biologii molekularnej, inżynierii genetycznej oraz immunochemii. Pełni funkcję młodszego specjalisty ds. BiR, a od 2024 roku kieruje Działem Szkoleń. Jest odpowiedzialna za nadprodukcję i oczyszczanie białek, wykonywanie testów immunochemicznych oraz reakcje PCR i qPCR. Była kluczowym członkiem zespołu przy projektach dotyczących opracowania szczepionek dla zwierząt, w tym pierwszej polskiej szczepionki przeciwko zakażeniom wywoływanym przez bakterie E. coli, Campylobacter jejuni, a także leku i szczepionki na mastitis krów. Bierze czynny udział w opracowywaniu nowych, innowacyjnych rozwiązań w przedsiębiorstwie. Ukończyła biotechnologię molekularną na Politechnice Gdańskiej, uzyskując tytuł magistra inżyniera. Aktywnie zarządza i rozwija dział Szkoleń ponadto współprowadzi szkolenia z zakresu real-time PCR, PCR oraz technik biologii molekularnej, a także współprowadzi social-media przedsiębiorstwa.

Uwagi dodatkowe

Szkolenie odbędzie się wyłącznie, gdy zbierze się grupa 2 osób. 

Wszelkie programy szkoleniowe, materiały dydaktyczne oraz ich treść stanowią własność intelektualną Zakładu Badawczo-Wdrożeniowego Ośrodka Salmonella IMMUNOLAB sp. z o.o. i są chronione prawem autorskim. Zabrania się ich kopiowania, modyfikowania, powielania, udostępniania osobom trzecim oraz wykorzystywania w całości lub w części do celów innych niż uzgodnione, bez pisemnej zgody właściciela praw autorskich.

Szkolenia, którego szukasz nie ma w naszej ofercie? Napisz do nas: szkolenia@immunolab.com.pl , stale się rozwijamy i poszerzamy ofertę, być może szkolenie, którego szukasz jest już w przygotowaniu.