Zapraszamy na specjalistyczne szkolenie z techniki real-time PCR wraz z analizą danych! Kompleksowe połączenie teorii oraz części praktycznej w formie pracy z płytką pozwoli poczuć się pewnie w metodzie, a także analizie danych.  Podnieś swoje kompetencje i zdobądź praktyczne doświadczenie, które pozwoli Ci spełniać zawodowe marzenia. 

Zapisz się już dziś!

Cel szkolenia

Nabycie umiejętności projektowanie reakcji qPCR oraz analizy danych.

Zakres merytoryczny:

 I część teoretyczna 

• Zapoznanie z przepisami BHP i oceną ryzyka
• Podstawowe informacje na temat metody qPCR i jej modyfikacje
• Mechanizm działania klasycznego PCR a real-time PCR
• Startery i sondy
• Rodzaje sond (np. TaqMan, Molecular Beacons)
• Kryteria wyboru starterów i sond
• Wybór odczynników, sprzętu i ich znaczenie
• Metody izolacji materiału genetycznego – DNA/RNA
• Metody oceny skuteczności izolacji materiału genetycznego  
• Reakcja rtPCR
• Przygotowanie prób do reakcji qPCR
• Teoretyczny wstęp do analizy krzywych amplifikacyjnych
• Metoda absolutna vs względna

I część praktyczna

• Izolacja DNA bakteryjnego oraz ocena jego ilości i czystości

II część praktyczna

• Projektowanie eksperymentu w tym profilu temperaturowo-czasowego
• Obsługa termocyklera 
• Przygotowanie reakcji oraz praca z płytką 

II część teoretyczna 

• Projektowanie starterów, wybór stabilnego genu referencyjnego
• Jak kontrolować przebieg reakcji?
• Jak interpretować wyniki?
• Różne zastosowania metody qPCR 
• Analiza wyników przeprowadzonego badania w tym analiza krzywych amplifikacji, interpretacja krzywych amplifikacji, identyfikacja problemów (np. niespecyficzne produkty, brak amplifikacji), analiza krzywych topnienia (dla SYBR Green), ocena specyficzności produktów PCR
• Optymalizacja i troubleshooting

Adresaci szkolenia

• Studenci kierunków diagnostyka laboratoryjna, mikrobiologia, biotechnologia, biologia, chemia i pokrewne
• Pracownicy laboratoriów badawczych i diagnostycznych świadczących badania z zakresu biologii molekularnej, mikrobiologii.

Metody pracy

• Część Teoretyczna: Wykład

Przedstawienie niezbędnych zagadnień teoretycznych związanych z techniką real-Time PCR, umożliwienie uczestnikom zrozumienia podstaw teoretycznych niezbędnych do wykonania ćwiczeń praktycznych, dostarczenie praktycznych przykładów, wskazówek i porad dotyczących optymalizacji oraz problemów i ich rozwiązań. Uczestnicy mają możliwość zadawania pytań na bieżąco. W drugim dniu szkolenia “case studies” – analiza rzeczywistych przypadków użycia real-Time PCR w różnych aplikacjach, takich jak diagnostyka kliniczna, badania naukowe, kontrola jakości.

• Część Praktyczna: Indywidualna praca pod nadzorem prowadzących

Zdobycie praktycznych umiejętności w zakresie przeprowadzanie reakcji real-Time PCR. Nabycie doświadczenia w analizie danych z wykorzystaniem dostępnego oprogramowania. Rozwiązanie problemów napotkanych podczas praktyki z pomocą ekspertów.

Forma: Ćwiczenia praktyczne w tym samodzielna izolacja DNA, kontrola ilości i jakości wyizolowanego materiału, przygotowanie prób, samodzielne pipetowanie, przygotowanie mieszaniny reakcyjnej, przeprowadzenie reakcji Real-Time PCR tj. ustawianie parametrów sprzętu, programowanie reakcji, monitorowanie przebiegu reakcji.

Analiza danych: Interpretacja wyników qPCR za pomocą specjalistycznego oprogramowania. Identyfikacja i rozwiązywanie problemów (np. niespecyficzne produkty, problemy z amplifikacją). Dyskusje na temat napotkanych problemów i wspólne rozwiązywanie. Wymiana doświadczeń i między uczestnikami oraz indywidualne konsultacje.

Program szkolenia

Efekty szkolenia dla uczestników i dla organizacji

To szkolenie wyposaży Cię w:

Wiedzę:

• Znajomość podstawowych zasad reakcji real-time PCR
• Rozumienie mechanizmu działania reakcji
• Wiedza na temat składników reakcji (matryca DNA, startery, sondy, polimeraza) i ich roli.
• Znajomość różnic między sondami stosowanymi w reakcji, takimi jak SYBR Green i sondy TaqMan.
• Znajomość zastosowań real-time PCR w diagnostyce i badaniach naukowych
• Umiejętność analizowania i interpretowania krzywych amplifikacji i topnienia
• Znajomość metod analizy danych i interpretacji wyników metoda względną i bezwzględną

Umiejętności:

• Przygotowanie i optymalizacja reakcji 
• Samodzielne przygotowanie mieszanin reakcyjnych
• Umiejętność projektowania i optymalizacji starterów 
• Obsługa termocyklera Applied Biosystem oraz innych urządzeń laboratoryjnych
• Programowanie i monitorowanie przebiegu reakcji
• Umiejętność rozwiązywania problemów technicznych podczas reakcji
• Przeprowadzanie analizy wyników z wykorzystaniem specjalistycznego oprogramowania
• Interpretacja wyników i wnioskowanie na ich podstawie
• Rozwiązywanie problemów związanych z niespecyficznymi produktami, brakami amplifikacji itp.

Postawy/Kompetencje społeczne:

• Efektywna komunikacja i współpraca z innymi uczestnikami i prowadzącymi
• Umiejętność dzielenia się wiedzą i doświadczeniami z innymi
• Świadomość znaczenia bezpieczeństwa i higieny pracy w laboratorium
• Stosowanie odpowiednich procedur i środków ochrony osobistej
• Dążenie do ciągłego rozwoju tj. otwartość na nowe technologie i metody.

Inne:

• Efektywne planowanie i organizacja pracy w laboratorium.
• Umiejętność zarządzania czasem podczas przeprowadzania eksperymentów
• Umiejętność krytycznej analizy wyników eksperymentalnych.
• Szybkie i efektywne rozwiązywanie problemów napotkanych podczas pracy laboratoryjnej

Dokument wystawiany po szkoleniu

Dokument w formie papierowej  wystawiany po szkoleniu potwierdzający uczestnictwo w szkoleniu, wydawany bezterminowo.

Biogramy trenerów

Natalia Sowa-Rogozińska 

W 2016 r. uzyskała tytuł magistra biologii, broniąc pracę pt. „Poziom i synteza mitochondrialnego DNA w komórkach fibroblastów ludzkich” w Katedrze Biologii Molekularnej Wydziału Biologii Uniwersytetu Gdańskiego. W tym samym roku została słuchaczką Studium Doktoranckiego. Od początku studiów doktoranckich pełniła rolę głównej wykonawczyni w grancie NCN oraz kierowała dwoma grantami „Młody Naukowiec”. W ramach swojej pracy doktorskiej zajmowała się szczegółową charakterystyką kanałów błonowych ER w kontekście transportu substratów procesu ERAD. Wyniki badań były prezentowane na licznych konferencjach krajowych i międzynarodowych. Autorka publikacji w renomowanych czasopismach naukowych (DOI: 10.3390/toxins11060350, 10.3390/ijms20061307, 10.3390/ijms23010117, 10.18388/abp.2017_2303).

W Immunolabie zatrudniona od 2020 r. Obecnie pracuje na stanowisku młodszego specjalisty i pełni rolę kierownika Zakładu Inżynierii Genetycznej. Posiada szerokie doświadczenie laboratoryjne obejmujące m.in. prowadzenie hodowli bakterii i linii komórkowych w warunkach in vitro, izolację DNA/RNA, rt-PCR, qPCR, nadprodukcję i oczyszczanie białek, western blotting, transfekcję (w tym z użyciem siRNA), cytometrię przepływową czy testy żywotności. Obsługuje zaawansowaną aparaturę laboratoryjną, w tym termocyklery i mikroskopy oraz narzędzia bioinformatyczne i statystyczne. Prowadziła testy diagnostyczne w kierunku SARS-CoV-2, analizując wyniki RT-PCR oraz testy ELISA.

Ukończyła liczne szkolenia, m.in. w zakresie wykorzystania zwierząt do celów naukowych, gospodarki odpadami medycznymi i weterynaryjnymi, innowacyjnych technologii do analizy komórek, mikroskopii konfokalnej czy real-time PCR.

Od lat aktywnie angażuje się w działalność dydaktyczną i szkoleniową współorganizując wiele inicjatyw, w tym warsztaty w ramach corocznej akcji popularno-naukowej pt. „Noc Biologów” czy Dnia Otwartego Wydziału Biologii Uniwersytetu. Specjalizuje się w prowadzeniu profesjonalnych szkoleń, które dot. Techniki real-time PCR z analizą danych czy hodowle komórek in vitro.

Magdalena Ponichtera

Doświadczony pracownik w dziale Badań i Rozwoju w IMMUNOLAB sp. z o.o. Od 2018 roku zajmuje się badaniami z zakresu biologii molekularnej, inżynierii genetycznej oraz immunochemii. Pełni funkcję młodszego specjalisty ds. BiR, a od 2024 roku kieruje Działem Szkoleń. Jest odpowiedzialna za nadprodukcję i oczyszczanie białek, wykonywanie testów immunochemicznych oraz reakcje PCR i qPCR. Była kluczowym członkiem zespołu przy projektach dotyczących opracowania szczepionek dla zwierząt, w tym pierwszej polskiej szczepionki przeciwko zakażeniom wywoływanym przez bakterie E. coli, Campylobacter jejuni, a także leku i szczepionki na mastitis krów. Bierze czynny udział w opracowywaniu nowych, innowacyjnych rozwiązań w przedsiębiorstwie. Ukończyła biotechnologię molekularną na Politechnice Gdańskiej, uzyskując tytuł magistra inżyniera. Aktywnie zarządza i rozwija dział Szkoleń ponadto współprowadzi szkolenia z zakresu real-time PCR, PCR oraz technik biologii molekularnej, a także współprowadzi social-media przedsiębiorstwa.

Uwagi dodatkowe

Szkolenie odbędzie się wyłącznie, gdy zbierze się grupa 2 osób.

Szkolenia, którego szukasz nie ma w naszej ofercie? Napisz do nas: szkolenia@immunolab.com.pl , stale się rozwijamy i poszerzamy ofertę, być może szkolenie, którego szukasz jest już w przygotowaniu.

Zapraszamy na specjalistyczne szkolenie, które wyposaży Cię w wiedzę i umiejętności niezbędne do precyzyjnego oznaczania antybiotykowrażliwości bakterii, skuteczna diagnostyka jest podstawą skutecznej terapii.

Zapisz się już dziś!

Cel szkolenia

Nabycie wiedzy i umiejętności, a także jej aktualizacja i ugruntowanie w zakresie oznaczania wrażliwości bakterii na antybiotyki metodą dyfuzyjno-krążkową.

Zakres merytoryczny:

• Definicja antybiotykowrażliwości.
• Przedstawienie metody dyfuzyjno-krążkowej.
• Procedura oznaczenia wrażliwości bakterii na antybiotyki:

• • Wybór podłoża do badań.
  • Przygotowanie podłoża. 
  • Przygotowanie inokulum.
  • Inokulacja płytek z podłoże stałym.
  • Nakładanie krążków z antybiotykami. 
  • Inkubacja płytek – dobór właściwych warunków do gatunku bakterii.
  • Kontrola wzrostu bakterii na płytkach.
  • Pomiar stref zahamowania wzrostu.
  • Interpretacja wyników. 

Adresaci szkolenia

• Studenci kierunków diagnostyka laboratoryjna, mikrobiologia, biotechnologia, biologia.

• Pracownicy laboratoriów diagnostycznych świadczących badania z zakresu mikrobiologii.
• Pracownicy laboratoriów badawczych.

Minimalne wymagania dot. uczestnictwa: znajomość podstawowych zasad pracy w laboratorium,

Metody pracy

• wykład jako element dopełniający część praktyczną, przedstawiający niezbędne zagadnienia teoretyczne wzbogacone o praktyczne przykłady oraz cenne wskazówki i porady,
• pokazy jako forma demonstracji, prowadzone przez ekspertów, mające na celu zobrazowanie technik i metod pracy,
• warsztaty praktyczne – indywidualna praca pod nadzorem ekspertów stanowi przeważającą część szkolenia.

Program szkolenia

Efekty szkolenia dla uczestników i dla organizacji

Po szkoleniu uczestnik rozwinie:

• Wiedzę:

• Wie, czym jest badanie lekowrażliwości. 
• Zna zarówno teoretycznie jak i praktycznie metodę oznaczania antybiotykowrażliwości bakterii na antybiotyki metodą dyfuzyjno- krążkową.
• Potrafi dobrać podłoża dla badanej bakterii pod kątem antybiotykowrażliwości, a także potrafi je wykonać. 
• Obsługuje densytometr w celu pomiaru gęstości bakterii.
• Potrafi mierzyć strefy zahamowania wzrostu bakterii.
• Potrafi interpretować uzyskane wyniki odnosząc je do standardów.  

• Umiejętności:

• Prawidłowo wykonuje badanie na każdym etapie.
• Profesjonalnie opracowuje i interpretuje wyniki badań.

• Postawy/Kompetencje społeczne:
• Okazuje profesjonalizm w pracach laboratoryjnych.
• Ma przekonanie o sensie, wartości i potrzebie oznaczania wrażliwości bakterii na antybiotyki.
• Ma świadomość powagi problemu lekooprności wśród bakterii chorobotwórczych. 

Dokument wystawiany po szkoleniu

Dokument zaświadczenia w formie papierowej  wystawiany po szkoleniu potwierdzający uczestnictwo w szkoleniu, wydawany bezterminowo.

Biogramy trenerów

Sandra Słomińska

Doświadczony mikrobiolog z wieloletnim stażem w badaniach laboratoryjnych i analityce mikroorganizmów. Specjalista BHP z doświadczeniem w zapewnianiu bezpieczeństwa i higieny pracy w branży biotechnologicznej. Podczas studiów magisterskich badała zdolność pochłaniania u królików zarażonych eksperymentalnie trzema szczepami będącymi wariantami antygenowymi wirusa RHD (rabbit haemorrhagic disease). Ponadto podczas studiów odbyła praktyczne szkolenie w wiwarium katedry mikrobiologii i immunologii. Członek Polskiego Towarzystwa Nauk o Zwierzętach Laboratoryjnych (PolLASA).

W przedsiębiorstwie Immunolab zatrudniona od 2017 roku, obecnie na stanowisku Starszego specjalisty ds. produkcji. Pełni funkcję kierownika Działu Produkcji oraz Specjalisty ds. BHP. Aktywnie uczestniczy w pracach B+R. Odpowiedzialna za prowadzenie badań i wdrożenie w roku 2022 wyrobu medycznego – osocze królicze do identyfikacji gronkowców koagulazo-dodatnich. Posiada wieloletnie doświadczenie (od 2017) w produkcji surowic do identyfikacji bakterii Salmonella. Ukończyła kurs metodyczny dla wykładowców i organizatorów szkoleń. Specjalizuje się w prowadzeniu szkoleń i warsztatów dla różnych grup odbiorców. Szkolenia obejmują szeroki zakres tematyczny m.in.: izolacja i identyfikacja bakterii, serologiczna identyfikacja bakterii Salmonella, oznaczanie antybiotykowrażliwości bakterii.

Jeśli jesteś zainteresowany udziałem w szkoleniach prowadzonych przez Sandrę lub chcesz dowiedzieć się więcej o jej pracy, zapraszamy do kontaktu: s.slominska@immunolab.com.pl

Dołącz do grona zadowolonych uczestników i rozwijaj swoją karierę w mikrobiologii i biotechnologii pod okiem doświadczonego specjalisty!

dr Hanna Sominka-Pierzchlewicz (po kliknięciu rozwijany tekst)

Posiada długoletnie doświadczenie w zakresie eksperymentalnej biologii molekularnej. Podczas studiów magisterskich badała wpływ trehalozy na powstawanie i rozpuszczalność ciał inkluzyjnych w bakteriach Escherichia coli (Uniwersytet Gdański) oraz potencjał przeciwnowotworowy związku 9-(2′-hydroksyetyloamino)-4-metylo-1-nitroakrydyny (C-1748) i jego przemiany metaboliczne z udziałem enzymów fazy II- UGT (Politechnika Gdańska). Podczas studiów doktoranckich rozwijała swoje umiejętności koncentrując się na rozwiązaniu zagadnienia proteolitycznej degradacji białek zachodzącej w retikulum endoplazmatycznym (ERAD). W ciągu swojej kariery naukowej zdobyła doświadczenie w planowaniu i prowadzeniu wielu metod eksperymentalnych m.in.: nadprodukcja i oczyszczanie białek, oddziaływania białko-białko, wyciszanie ekspresji genów, PCR, Western Blotting, ELISA, prowadzenie hodowli komórkowych bakteryjnych i eukariotycznych, badania in vitro.

W przedsiębiorstwie Immunolab zatrudniona od 2020 roku, obecnie na stanowisku Starszego specjalisty. Pełni funkcję kierownika Działu Badań i Rozwoju oraz audytora wewnętrznego dla norm ISO 9001 i 13485, odpowiada również za nadzór nad infrastrukturą. W Zakładzie Inżynierii Genetycznej odpowiada za kwestie bezpieczeństwa. Od lat aktywnie angażuje się w działalność dydaktyczną
i szkoleniową. Specjalizuje się w prowadzeniu szkoleń i warsztatów dla różnych grup odbiorców. Szkolenia obejmują szeroki zakres tematyczny m.in.: izolacja
i identyfikacja bakterii, prowadzenie hodowli komórek eukariotycznych wraz z badaniami in vitro, podstawowe techniki laboratoryjne, obliczenia laboratoryjne.

Jeśli jesteś zainteresowany udziałem w szkoleniach prowadzonych przez Hannę lub chcesz dowiedzieć się więcej o jej pracy, zapraszamy do kontaktu:

• Email: h.sominka@immunolab.com.pl

Dołącz do grona zadowolonych uczestników i rozwijaj swoją karierę w mikrobiologii i biotechnologii pod okiem doświadczonego specjalisty!

Uwagi dodatkowe

Szkolenie odbędzie się wyłącznie, gdy zbierze się grupa 2 osób.

Szkolenia, którego szukasz nie ma w naszej ofercie? Napisz do nas: szkolenia@immunolab.com.pl , stale się rozwijamy i poszerzamy ofertę, być może szkolenie, którego szukasz jest już w przygotowaniu.

Zapraszamy na praktyczne szkolenie z izolacji i identyfikacji bakterii, skierowane do osób pracujących w laboratoriach mikrobiologicznych oraz wszystkich zainteresowanych technikami wykorzystywanymi w badaniach mikrobiologicznych. 

Podczas szkolenia uczestnicy zdobędą wiedzę teoretyczną i umiejętności praktyczne w zakresie izolacji bakterii z różnych próbek, przygotowania podłoży mikrobiologicznych, a także stosowania nowoczesnych metod identyfikacyjnych, w tym testów biochemicznych. 

Nasze zajęcia prowadzone są przez doświadczonych specjalistów i obejmują interaktywne ćwiczenia, które pozwolą uczestnikom na samodzielne przeprowadzenie procesów izolacyjnych i interpretację wyników. Po zakończeniu szkolenia każdy uczestnik otrzyma zaświadczenie potwierdzające zdobytą wiedzę i umiejętności, co zwiększy jego konkurencyjność na rynku pracy i podniesie kompetencje zawodowe.

Zapisz się już dziś!

Cel szkolenia

Szkolenie ma na celu wyposażenie uczestników w umiejętności związane z izolacją i identyfikacją bakterii. Dzięki temu zdobędą oni praktyczną wiedzę dotyczącą stosowania podstawowych technik mikrobiologicznych, w tym przygotowania podłoży hodowlanych, wykonywania posiewów oraz identyfikacji bakterii przy użyciu nowoczesnych metod laboratoryjnych​

Adresaci szkolenia

Szkolenie skierowane jest do studentów, absolwentów, pracowników laboratoriów badawczych oraz osób, które chcą poszerzyć swoją wiedzę z zakresu mikrobiologii i pracy laboratoryjnej. Wymagana jest podstawowa znajomość zasad pracy laboratoryjnej​

Metody pracy

W ramach szkolenia stosowane są wykłady teoretyczne oraz demonstracje technik laboratoryjnych, jednak kluczowy nacisk położony jest na praktyczne warsztaty. Uczestnicy pracują indywidualnie pod okiem ekspertów, mając dostęp do sprzętu laboratoryjnego i specjalistycznych urządzeń​

Program szkolenia

Program obejmuje cztery dni intensywnych zajęć, podczas których uczestnicy zapoznają się z podstawami mikrobiologii, technikami izolacji i identyfikacji bakterii, metodami barwienia i testów enzymatycznych, a także analizą i interpretacją wyników​

Efekty szkolenia dla uczestników i dla organizacji

Uczestnicy zyskają umiejętności obsługi urządzeń laboratoryjnych, wykonywania podstawowych procedur mikrobiologicznych oraz świadomość zasad bezpieczeństwa pracy w laboratorium. Dla organizacji szkolenie to może oznaczać wzrost kompetencji kadry laboratoryjnej, co przekłada się na wyższą jakość analiz i wyników​

Dokument wystawiany po szkoleniu

Po zakończeniu szkolenia uczestnicy otrzymają bezterminowy certyfikat potwierdzający zdobycie wiedzy i umiejętności z zakresu izolacji i identyfikacji bakterii​

Harmonogram 

Biogramy trenerów

mgr Sandra Słomińska

Doświadczony mikrobiolog z wieloletnim stażem w badaniach laboratoryjnych i analityce mikroorganizmów. Specjalista BHP z doświadczeniem w zapewnianiu bezpieczeństwa i higieny pracy w branży biotechnologicznej. Podczas studiów magisterskich badała zdolność pochłaniania u królików zarażonych eksperymentalnie trzema szczepami będącymi wariantami antygenowymi wirusa RHD (rabbit haemorrhagic disease). Ponadto podczas studiów odbyła praktyczne szkolenie w wiwarium katedry mikrobiologii i immunologii. Członek Polskiego Towarzystwa Nauk o Zwierzętach Laboratoryjnych (PolLASA).

W przedsiębiorstwie Immunolab zatrudniona od 2017 roku, obecnie na stanowisku Starszego specjalisty ds. produkcji. Pełni funkcję kierownika Działu Produkcji oraz Specjalisty ds. BHP. Aktywnie uczestniczy w pracach B+R. Odpowiedzialna za prowadzenie badań i wdrożenie w roku 2022 wyrobu medycznego – osocze królicze do identyfikacji gronkowców koagulazo-dodatnich. Posiada wieloletnie doświadczenie (od 2017) w produkcji surowic do identyfikacji bakterii Salmonella. Ukończyła kurs metodyczny dla wykładowców i organizatorów szkoleń. Specjalizuje się w prowadzeniu szkoleń i warsztatów dla różnych grup odbiorców. Szkolenia obejmują szeroki zakres tematyczny m.in.: izolacja i identyfikacja bakterii, serologiczna identyfikacja bakterii Salmonella, oznaczanie antybiotykowrażliwości bakterii.

Jeśli jesteś zainteresowany udziałem w szkoleniach prowadzonych przez Sandrę lub chcesz dowiedzieć się więcej o jej pracy, zapraszamy do kontaktu:

• Email: s.slominska@immunolab.com.pl

Dołącz do grona zadowolonych uczestników i rozwijaj swoją karierę w mikrobiologii i biotechnologii pod okiem doświadczonego specjalisty!

dr Hanna Sominka-Pierzchlewicz

Posiada długoletnie doświadczenie w zakresie eksperymentalnej biologii molekularnej. Podczas studiów magisterskich badała wpływ trehalozy na powstawanie i rozpuszczalność ciał inkluzyjnych w bakteriach Escherichia coli (Uniwersytet Gdański) oraz potencjał przeciwnowotworowy związku 9-(2′-hydroksyetyloamino)-4-metylo-1-nitroakrydyny (C-1748) i jego przemiany metaboliczne z udziałem enzymów fazy II- UGT (Politechnika Gdańska). Podczas studiów doktoranckich rozwijała swoje umiejętności koncentrując się na rozwiązaniu zagadnienia proteolitycznej degradacji białek zachodzącej w retikulum endoplazmatycznym (ERAD). W ciągu swojej kariery naukowej zdobyła doświadczenie w planowaniu i prowadzeniu wielu metod eksperymentalnych m.in.: nadprodukcja i oczyszczanie białek, oddziaływania białko-białko, wyciszanie ekspresji genów, PCR, Western Blotting, ELISA, prowadzenie hodowli komórkowych bakteryjnych i eukariotycznych, badania in vitro.

W przedsiębiorstwie Immunolab zatrudniona od 2020 roku, obecnie na stanowisku Starszego specjalisty. Pełni funkcję kierownika Działu Badań i Rozwoju oraz audytora wewnętrznego dla norm ISO 9001 i 13485, odpowiada również za nadzór nad infrastrukturą. W Zakładzie Inżynierii Genetycznej odpowiada za kwestie bezpieczeństwa. Od lat aktywnie angażuje się w działalność dydaktyczną
i szkoleniową. Specjalizuje się w prowadzeniu szkoleń i warsztatów dla różnych grup odbiorców. Szkolenia obejmują szeroki zakres tematyczny m.in.: izolacja
i identyfikacja bakterii, prowadzenie hodowli komórek eukariotycznych wraz z badaniami in vitro, podstawowe techniki laboratoryjne, obliczenia laboratoryjne.

Jeśli jesteś zainteresowany udziałem w szkoleniach prowadzonych przez Hannę lub chcesz dowiedzieć się więcej o jej pracy, zapraszamy do kontaktu:

• Email: h.sominka@immunolab.com.pl

Dołącz do grona zadowolonych uczestników i rozwijaj swoją karierę w biotechnologii pod okiem doświadczonego specjalisty!

Nr DOI: 10.3390/toxins11060350, 10.3390/ijms20061307, 10.3390/ijms23010117, 10.1111/mmi.14322, 10.1016/j.pharep.2018.03.007

Rekomendacje

Uwagi dodatkowe

Szkolenie odbędzie się wyłącznie, gdy zbierze się grupa 2 osób.

Szkolenia, którego szukasz nie ma w naszej ofercie? Napisz do nas: szkolenia@immunolab.com.pl , stale się rozwijamy i poszerzamy ofertę, być może szkolenie, którego szukasz jest już w przygotowaniu.

Serdecznie zapraszamy na szkolenie z Podstaw mikrobiologii! Dowiedz się co Cię otacza, jak przygotowywać i sterylizować podłoża, wykonywać posiewy, liczyć bakterie i obserwować je pod mikroskopem. Zarejestruj się i zdobądź solidne podstawy mikrobiologii, które otworzą przed Tobą nowe możliwości zawodowe!

Zapisz się już dziś!

Cel szkolenia: 

Z nami nabędziesz wiedzę i umiejętności w zakresie podstaw mikrobiologii, w szczególności dotyczącą przygotowania podłoży, wykonywania posiewów, w tym ilościowych.

Cele merytoryczne:

• Zasady Bezpieczeństwa i Higieny Pracy w Laboratorium Mikrobiologicznym, zasady pracy w laboratorium mikrobiologicznym, obsługa sprzętu laboratoryjnego.
• Zapoznanie z podstawami mikrobiologii, tj. metody dezynfekcji, rodzaje podłoży, kontrola jakości podłoży, rodzaje posiewów, metody obliczania ilości bakterii na płytce
• Przygotowanie podłoży do namnażania i izolacji bakterii 
• Wykonanie różnych typów posiewów 
• Pomiar zmętnienia i wykonanie seryjnych rozcieńczeń badanej próbki 
• Obliczenia liczby CFU w badanych próbkach

Adresaci szkolenia

Jesteś pracownikiem laboratorium mikrobiologicznego lub diagnostycznego? A może  studiujesz na kierunku  mikrobiologia, biologia lub pokrewnym?  A może chcesz pogłębić lub odświeżyć podstawową wiedzę z pracy w laboratorium? Jeśli na któreś z powyższych pytań odpowiedziałeś TAK, to szkolenie jest dla Ciebie!

Metody pracy

• wykład jako element dopełniający część praktyczną, przedstawiający niezbędne zagadnienia teoretyczne wzbogacone o praktyczne przykłady oraz cenne wskazówki i porady
• pokazy jako forma demonstracji, prowadzone przez ekspertów, mające na celu zobrazowanie technik i metod pracy
• warsztaty praktyczne – indywidualna praca pod nadzorem ekspertów stanowi przeważającą część szkolenia

Program szkolenia

Efekty szkolenia dla uczestników i dla organizacji

Po szkoleniu zyskasz:

Wiedzę:

• zna podstawowe rodzaje sterylizacji i dezynfekcji
• potrafi dobrać i przygotować podłoże odpowiednie dla wzrostu danych bakterii
• zna techniki wykonywania posiewów
• zna definicję i potrafi określić CFU/ml
• zna warunki oraz metody hodowli mikroorganizmów 

Umiejętności:

• potrafi obliczyć liczbę bakterii w próbkach różnymi metodami
• potrafi wykonać podłoże namnażające i izolacyjne, zarówno stałe jak i płynne 
• potrafi wykonać  obliczenia zmętnienia oraz seryjne rozcieńczenia próbki
• potrafi wykonać posiewy metodą spiralną oraz tradycyjną 
• potrafi obliczyć CFU, zarówno ręcznie jak i za pomocą czytnika płytek

Postawy/Kompetencje społeczne:

• Okazuje profesjonalizm w pracach laboratoryjnych.
• Ma świadomość znaczenia prawidłowego postępowania z urządzeniami i hodowlami bakteryjnymi w laboratorium.
• Ma rozpoznanie teoretyczne i praktyczne przydatne w ewentualnych decyzjach związanych ze ścieżką kariery laboratoryjnej.

Dokument wystawiany po szkoleniu

Zaświadczenie w formie papierowej  wystawiany po szkoleniu potwierdzający uczestnictwo w szkoleniu, wydawany bezterminowo 

Biogramy trenerów

Sandra Słomińska

Doświadczony mikrobiolog z wieloletnim stażem w badaniach laboratoryjnych i analityce mikroorganizmów. Specjalista BHP z doświadczeniem w zapewnianiu bezpieczeństwa i higieny pracy w branży biotechnologicznej. Podczas studiów magisterskich badała zdolność pochłaniania u królików zarażonych eksperymentalnie trzema szczepami będącymi wariantami antygenowymi wirusa RHD (rabbit haemorrhagic disease). Ponadto podczas studiów odbyła praktyczne szkolenie w wiwarium katedry mikrobiologii i immunologii. Członek Polskiego Towarzystwa Nauk o Zwierzętach Laboratoryjnych (PolLASA).

W przedsiębiorstwie Immunolab zatrudniona od 2017 roku, obecnie na stanowisku Starszego specjalisty ds. produkcji. Pełni funkcję kierownika Działu Produkcji oraz Specjalisty ds. BHP. Aktywnie uczestniczy w pracach B+R. Odpowiedzialna za prowadzenie badań i wdrożenie w roku 2022 wyrobu medycznego – osocze królicze do identyfikacji gronkowców koagulazo-dodatnich. Posiada wieloletnie doświadczenie (od 2017) w produkcji surowic do identyfikacji bakterii Salmonella. Ukończyła kurs metodyczny dla wykładowców i organizatorów szkoleń. Specjalizuje się w prowadzeniu szkoleń i warsztatów dla różnych grup odbiorców. Szkolenia obejmują szeroki zakres tematyczny m.in.: izolacja i identyfikacja bakterii, serologiczna identyfikacja bakterii Salmonella, oznaczanie antybiotykowrażliwości bakterii.

Magdalena Ponichtera

Doświadczony pracownik w dziale Badań i Rozwoju w IMMUNOLAB sp. z o.o. Od 2018 roku zajmuje się badaniami z zakresu biologii molekularnej, inżynierii genetycznej oraz immunochemii. Pełni funkcję młodszego specjalisty ds. BiR, a od 2024 roku kieruje Działem Szkoleń. Jest odpowiedzialna za nadprodukcję i oczyszczanie białek, wykonywanie testów immunochemicznych oraz reakcje PCR i qPCR. Była kluczowym członkiem zespołu przy projektach dotyczących opracowania szczepionek dla zwierząt, w tym pierwszej polskiej szczepionki przeciwko zakażeniom wywoływanym przez bakterie E. coli, Campylobacter jejuni, a także leku i szczepionki na mastitis krów. Bierze czynny udział w opracowywaniu nowych, innowacyjnych rozwiązań w przedsiębiorstwie. Ukończyła biotechnologię molekularną na Politechnice Gdańskiej, uzyskując tytuł magistra inżyniera. Aktywnie zarządza i rozwija dział Szkoleń ponadto współprowadzi szkolenia z zakresu real-time PCR, PCR oraz technik biologii molekularnej, a także współprowadzi social-media przedsiębiorstwa

Uwagi dodatkowe:

Forma szkolenia: warsztatowa, teoretyczno-praktyczna

Szkolenie odbędzie się wyłącznie, gdy zbierze się grupa 2 osób.

Szkolenia, którego szukasz nie ma w naszej ofercie? Napisz do nas: szkolenia@immunolab.com.pl , stale się rozwijamy i poszerzamy ofertę, być może szkolenie, którego szukasz jest już w przygotowaniu.